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单倍体的应用

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单倍体的应用

    

    由于单倍体植株或双单倍体植株具有完全纯合的基因型,因此,单倍体培养体系的建立对于植物育种、分子标记、遗传图谱构建、基因定位、基因克隆等均有极其重要的意义。尤其在植物育种和遗传研究中具有重要的应用价值。

    1)缩短育种年限,加速育种进程

    常规育种在杂交F5,F6代开始选择,而植物性细胞培养在F1或F2代进行培养,再人工加倍处理,克服了后代的分离,大大缩短了育种周期(见图3.11)。有些植物特别是雌雄异株的多年生木本植物如杨树,其生长周期长、基因组高度杂合,单倍体育种将是最为理想的选择。

    

图3.11 单倍体加快传统育种进程(Chan S W L,2010)

    2)提高目标基因型的选择效率

    花粉单倍体是纯合配子体,从来源于配子体的植株中选择某一种基因型的概率是(1/2)n,而从常规杂交F2代群体中,选择某一基因型的概率为(1/2)2n,故单倍体育种的选择效率为常规育种的2n倍。

    例如,二倍体供体植株基因型为AaBb,要从后代中选择基因为AAbb的纯合单株。常规方法:AAbb出现的概率为1/16,并且不能将AAbb与Aabb,aAbb区分开。单倍体方法:AAbb出现的概率为1/4。

    3)利于远缘杂种的稳定

    由于远缘杂交亲本间的基因组存在着较大的差异,杂种的染色体组型也往往有所不同,因而会造成杂种后代性状的巨大分离,通过诱导杂种后代获得单倍体或双单倍体植株,可以有效克服性状分离,从而获得纯合稳定,并具有优良性状的远缘杂种新类型。

    4)提高诱变育种的效率

    单倍体或双单倍体植株不受显隐性的影响,在诱变育种中能在当代及时获得突变个体,染色体加倍后成为稳定的纯系。

    5)外源基因转化的理想受体

    利用单倍体植株的原生质体、细胞和组织作为转化受体,有利于外源基因的整合和表达。对转基因单倍体进行染色体加倍,得到纯合的双单倍体转基因植株,可以避免转导的外源基因在后代分离中丢失,有利于稳定遗传。

    6)植物分子生物学研究的理想群体

    单倍体只具有单一功能的基因模式,可以排除杂合性等因素的干扰,是研究基因性质和功能的理想材料。由单倍体经染色体加倍产生的双单倍体株系(DH群体)可保持群体中每种基因型的植株,无遗传变异,且便于跟踪研究,可以重复进行检测,尤其是对数量性状的分析。在分子标记方面,DH群体被认为是RFLP,RAPD,AFLP等分子标记和遗传图谱研究的好材料,可以有效提高基因定位、图谱构建的准确性,并已经在多种作物的分子标记研究中起到了重要作用。

    参考文献

    Alatorceva T A,Tymov V S.Comparison of development of unpollinated ovaries of apo-and amphimictic lines of corn in vitro[C].Proc Int Symp Saratov,1994:8-9.

    Bhagyalakshmi N.Factors influencing direct shoot regeneration from ovary explants of saffron[J].Plant Cell Tissue Organ Culture,1999,58:205-211.

    Caglar G,Abak K.Efficiency of haploid production in cucumber.Cucurbit Genet Coop Report,1996,19:36 -37.

    Castillo A M,Cistue L.Production of gynogenic haploids of Hordeum vulgare L[J].Plant Cell Rep,1993,12:139-146.

    Chan S W L.Chromosome engineering:power tools for plant genetics[J].Trends in Biotechnology,2010,28(12):605-610.

    Gémes-Juhász A,Balogh P,Ferenczy A,et al.Effect of optimal stage of female gametophyte and heat treatment on in vitro gynogenesis induction in cucumber(Cucumis sativus L.)[J].Plant Cell Reports,2002,21:105-111.

    Gioffriau E,Kahane R,Rancillac M.Variation of gynogenesis ability in onion(Allium cepa L.)[J].Euphytica,1997,94:37-44.

    Guha S,Mahesewari S C.In vitro production of embryos from anthers of Datura[J].Nature,1964,104:497-498.

    Gurel S,Gurel E,Kaya Z.Doubled haploid plant production from unpollinated ovules of sugar beet(Beta vulgaris L)[J].Plant Cell Rep,2000,19:1155-1159.

    Harland S C.A note on a peculiar type of“rougue”in Sea Island cotton[J].Agr News Barbados,1920,19:29.

    Kantartzi S K,Roupakias D G.In vitro gynogenesis in cotton(Gossypium sp.)[J].Plant Cell Tissue Organ Culture,2009,96:53-57.

    Keller W A,Stringam G R.In:Thorpe T A(ed).Frontiers of plant tissue culture[M].Calgary:The International Association of Plant Tissue Culture,1978:113-122.

    Kojima G,Kawaguehi T.Dihaploids derived from unpollinated ovule culture of Chines chives[C].Allium Symp.Wellesbourne,1988:212-217.

    Lantos C,Juhasz A G,Somogyi G,et al.Improvement of isolated microspore culture of pepper(Capsicum annuum L.)via co-culture with ovary tissues of pepper or wheat[J].Plant Cell Tissue Organ Cult,2009,97(3):285-293.

    Puddephat I J,Robinson H T,Smith B M.Influence of stock plant pretreatment on gynogenic embryo induction from buds of onion[J].Plant Cell Tissue Organ Culture,1999,57:145-148.

    San Noeum L H.Haploids d'Hordeum vulgare L.par culture in vitro non fécondés[J].Ann Amélior Plantes,1976,26:751-754.

    Sibi M L,Kobbaissi A,Shekafandeh A.Green haploidplants from unpollinated ovary culture in tetraploid wheat(Triticum durum Defs.)[J].Euphytica,2001,122:351-359.

    Van Geyt J,Speckmann Jr G J,D'Halluin K,et al.In vitro induction of haploid plants from unpollinated ovules and ovaries of sugarbeet(Beta vulgaris L.)[J].Theor Appl Genet,1987,73:920-925.

    陈绍江,黎亮,李浩川,等.玉米单倍体育种技术(第2版)[M].北京:中国农业大学出版社,2012.

    陈小鹏,刘栓桃,孙小镭,等.黄瓜未授粉子房的胚状体诱导研究初报[J].西北农业学报,2005,14(2):148-151.

    谷祝平,郑国锠.百合未授粉子房的培养及其胚胎学观察[J].植物学报,1983,25(1):24-27.

    郭仲琛.水稻未授粉子房离体培养的初步研究[J].植物学报,1982,24(1):33-38.

    黄群飞,杨弘远,周嫦.大麦未授粉子房培养的胚胎学观察[J].植物学报,1982,24(4):295-299.

    蒋青青,刘杨,陈火英.激素组合与水解蛋白对番茄花药愈伤增值的影响[J].上海交通大学学报(农业科学版),2012,29(2):8-11,59.

    李英,王佳,季乐翔,等.植物单倍体技术及其应用的研究进展[J].中国细胞生物学学报,2011,33(9):1008-1014.

    潘莉,郑奇君.烟草未授粉子房单倍体诱导及影响因素[J].河南农业大学学报,1999,33(1):48-52.

    盛慧.利用大孢子技术培育黄瓜单倍体的前期研究[J].种子科技,2011,29(8):26-28.

    陶自荣,刘敏颂,祝仲纯.马铃薯未传粉子房离体培养诱导双单倍体植株[J].遗传学报,1988,15:329-334.

    田惠桥,杨弘远.韭菜未传粉子房培养中单倍体的胚胎发生和植株再生[J].实验生物学报,1989,22(2):139-142.

    王丽花,瞿素萍,杨秀梅,等.非洲菊未授粉胚珠的离体诱导和植株再生[J].植物生理学通讯,2007,43(6):1089-1092.

    王芹芹,陈火英,刘杨,等.小果型番茄花药愈伤组织诱导因素的研究[J].上海交通大学学报(农业科学版),2010,28(4):335-338,354.

    王文和.草莓离体雌核发育的研究[D].沈阳农业大学博士学位论文,2001.

    吴伯骥,郑国锠.从未传粉烟草子房诱导单倍体植株[J].植物学报,1982,24:125-129.

    伍成厚,梁承邺,叶秀麟.被子植物未受精胚珠与子房离体培养的研究进展[D].热带亚热带植物学报,2004,12(6):580-586.

    谢冰,王秀峰,樊治成.西葫芦离体雌核发育胚状体成苗影响因子分析[J].西北农业学报,2006,15(5):182-186.

    徐静.西葫芦雌核离体高效培养体系的建立[D].新疆农业大学硕士学位论文,2007.

    阎华,吴燕,陈小民,等.向日葵未受精胚珠培养时胚状体发生的显微观察[D].植物学报,1985,27(1):13-18.

    阎华,周嫦,杨弘远.向日葵未受精胚珠培养中各种影响因素的实验研究[J].武汉植物学研究,1988,6(4):319-327.

    郑泗军,蒋淑丽,洪彩霞,等.碳源和基因型对棉花未受精胚珠纤维离体发育的影响[D].棉花学报,1996,8:301-304.

    赵鹤.番茄雌核发育诱导研究[D].中国农业科学院硕士学位论文,2013.

    周嫦,杨弘远.从水稻未授粉的幼嫩子房培养出单倍体小植株[J].遗传学报,1980,7(3):287-288.

    周嫦,杨弘远.诱导水稻胚囊产生愈伤组织的离体实验[J].遗传,1981a,3:10-12.

    周嫦,杨弘远.水稻未受精胚囊的离体胚胎发生[J].植物学报,1981b,23:176-179.

    周嫦,杨弘远.未传粉子房与胚珠的离体培养[J].武汉大学学报,1982,3:61-72.

    朱丽萍,陈火英,庄天明,等.番茄不同花药长短及花粉发育时期其愈伤组织诱导率的相关性[J].上海交通大学学报(农业科学版),2005,23(3):239-243.

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